2401_86359930 2024-10-01 21:28 采纳率: 100%
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关于研究生做qpcr实验遇见的问题

想问一下大家,为什么跟师姐扩增一样的组织样本,扩增一样的基因,师姐做出来actin的ct为16,我做的在18.19。虽然师姐跟我做的actin和目的基因的ct差值都在5左右,为什么我的都要高一点呢? 我实在找不到问题在哪里

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  • 清水白石008 2024-10-07 06:17
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    在qPCR实验中,即使使用相同的样本和相同的引物,CT值的差异可能由多种因素引起。以下是一些可能导致您和师姐的CT值不同的原因,以及一些建议来帮助您排查问题:

    1. 样本质量

    • RNA质量:确保提取的RNA质量良好,未降解。RNA的完整性可以通过琼脂糖凝胶电泳或生物分析仪进行评估。
    • 样本处理:样本的处理和储存条件可能影响RNA的质量和稳定性。

    2. 实验操作

    • 反应体系:确保您和师姐的qPCR反应体系完全一致,包括引物浓度、酶、缓冲液和模板量等。
    • 混合均匀性:在准备反应液时,确保充分混合,避免气泡和不均匀分布。
    • PCR循环条件:确认PCR循环条件(如退火温度、延伸时间等)是否一致。

    3. 引物特性

    • 引物设计:确保引物的特性(如特异性、效率)相同。可以通过梯度PCR或标准曲线来评估引物的扩增效率。
    • 引物浓度:引物的浓度过高或过低都可能影响扩增效率。

    4. 仪器和试剂

    • 仪器校准:确保qPCR仪器的校准和维护良好,避免仪器误差。
    • 试剂批次:不同批次的试剂可能存在差异,确保使用相同批次的试剂。

    5. 数据分析

    • CT值计算:确保CT值的计算方法一致,使用相同的基线和阈值设置。
    • 相对定量:在进行相对定量时,确保使用相同的参考基因(如actin)进行校正。

    6. 技术重复

    • 重复实验:进行技术重复(如每个样本至少做三次重复)以评估实验的可重复性和一致性。

    7. 其他因素

    • 实验环境:实验室环境(如温度、湿度)可能影响反应,确保在相似的条件下进行实验。
    • 操作习惯:不同的操作习惯和技巧可能导致结果的差异,尽量保持一致的操作流程。

    结论

    建议您逐一排查上述因素,找出可能导致CT值差异的原因。与师姐沟通,了解她的实验细节和操作步骤,可能会帮助您发现问题所在。qPCR实验的成功往往依赖于细致的操作和严格的控制,祝您实验顺利!如果还有其他问题,欢迎随时询问。

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